牛奶蛋白質測定的優化操作

      牛奶蛋白質是牛奶檢測的重要指標，作為生命的物質基礎之一，蛋白質在催化生命體內各種反應進行、調節代謝、抵御外來物質入侵及控制遺傳信息等方面都起著至關重要的作用。目前，牛奶蛋白質的測定方法主要為國標凱氏定氮法，是有機化合物含氮量測定最常有的方法，是蛋白質測定的經典方法，即使用蛋白質測定儀來進行測定。蛋白質測定儀適用樣品廣泛，測定結果準確，重現性好，但試劑消耗量大，檢測時間長，消化約6～8 h，且消化后樣品需定容，定容時容量瓶未搖勻，很容易出現結晶現象，費時費力。
      為改善國標檢測方法樣品稱樣量大，消化時間長，消化后的樣品需定容，操作步驟多的現狀，本文對樣品的稱樣量進行了優化，經典凱氏定氮法液體樣品的稱樣量為1～25 mL,因牛奶樣品均勻度較好，故本方法將樣品的稱樣量優化為1.0～1.5g。將樣品的稱樣量從10g減小到1.5g，其他檢測條件不變。如果取樣具有代表性,改變樣品的稱樣量,對檢測結果的影響不大。
      樣品消化時間主要包括氧化時間，沸騰時間。氧化時間中濃硫酸將有機樣品中的碳轉化成CO2（這時的溶液為黑色），氫元素轉化為H2O，氮元素轉化為銨鹽。氧化完畢后，溶液變澄清，進入沸騰時間，在沸騰30 min后，樣品中氮元素全部轉化為氨，氮的回收率達到最高。樣品消化結束后，消化管中應剩余5-6 mL濃硫酸，如果消化時硫酸消耗完了，會造成氮的損失。在消化期間如果硫酸加入量少，樣品會出現結晶情況，因此，硫酸用量應適當，而硫酸用量取決于樣品量，本方法中硫酸量的優化參照的為國標方法，國標方法10 g樣品濃硫酸的用量為20 mL，即1 g樣品硫酸消耗的量為2 mL，現將樣品的稱樣量減小為1～1.5 g，硫酸的消耗量應不大于3 mL，為保證樣品消化完后濃硫酸的量有剩余，故將硫酸的量定優化為8.5 mL。